Il17d-flox 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Il17d-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-08088

品系全称

C57BL/6JCya-Il17dem1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-239114-Il17d-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Il17d-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-08088) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
每周秒杀
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
interleukin 17D
基因别称
IL-17D
染色体号
Chr 14 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_145837 | Ensembl: ENSMUST00000089494
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 3
敲除长度
~2.1 kb
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
基因Il17d,也称为Interleukin-17D,是IL-17家族成员之一,该家族包括IL-17A至IL-17F等六种相关因子。IL-17家族成员在免疫系统中发挥着重要作用,参与调节炎症反应和免疫应答。IL-17A是Th17细胞的标志性细胞因子,与自身免疫性疾病、炎症和肿瘤的发生发展密切相关[1]。IL-17F主要涉及粘膜宿主的防御机制,而IL-17E(IL-25)则是Th2免疫反应的增强剂。关于IL-17B、IL-17C和IL-17D的功能,目前仍知之甚少。

在SpA(脊柱关节炎)的免疫病理发生过程中,IL-17家族成员发挥着重要作用。IL-17A是一种促炎细胞因子,能够促进血管生成和破骨细胞生成。在IL-17家族成员中,IL-17A与IL-17F具有最高的氨基酸序列同源性。研究表明,IL-17A和IL-17F可能通过它们的细胞来源对SpA的免疫病理学产生影响[2]。

在哺乳动物胚胎发育过程中,长链非编码RNA(lncRNA)发挥着重要的调控作用。研究发现,基因激活相关的lncRNA在哺乳动物胚胎早期发育中发挥着重要作用。例如,microRNA(miRNA)抑制因子(pancRNA)的表达与它们对应基因的上调表达密切相关。研究发现,抑制pancRNA的IL17d mRNA配对体导致胚胎致死,而补充IL17D蛋白可以挽救胚胎发育。这表明,lncRNA可以调节转录机制,在胚胎早期发育中发挥着重要作用[3]。

在HLA-B27阳性强直性脊柱炎(AS)相关的急性前葡萄膜炎(AAU)中,血清中多种细胞因子和趋化因子水平显著升高。例如,IL-3、TNF-α、IL-6、IL-17D、IL-22等细胞因子的水平在AAU患者中显著高于健康对照组。这些结果表明,细胞因子和趋化因子在HLA-B27阳性AS相关AAU的免疫病理发生中发挥着重要作用[4]。

在牛呼吸道疾病(BRD)的免疫应答中,基因表达模式发生改变。研究发现,BRD和健康牛的年龄相关基因表达差异显著,但疾病状态对基因表达的影响并不明显。这表明,在牛的免疫发育过程中,年龄是一个重要的因素,它影响基因表达和免疫应答[5]。

在克隆猪胚胎发育过程中,IL-17D发挥着重要作用。研究发现,补充IL-17D可以改善克隆猪胚胎的发育能力,降低细胞凋亡水平。此外,IL-17D还可以激活凋亡相关途径,促进胚胎基因组激活(EGA)阶段的全球基因表达。这些结果表明,IL-17D在猪克隆胚胎的早期发育中发挥着重要作用[6]。

在卵巢上皮癌(EOC)中,基因表达谱和通路富集分析表明,IL-17D是差异表达基因之一。研究发现,IL-17D的表达与EOC的发病机制和预后密切相关。此外,IL-17D还与其他基因和通路一起,共同参与调控EOC的发生和发展[7]。

IL-17D是一种研究较少的IL-17家族成员,其在疾病发生发展中的作用尚不明确。研究发现,IL-17D在肿瘤和感染过程中发挥着重要作用。例如,IL-17D可以诱导炎症细胞因子的产生,参与调节免疫应答和炎症反应。此外,IL-17D还具有独特的结构和表达模式,使其在免疫系统中发挥着重要作用[8]。

IL-17D在软骨鱼类中也存在。研究发现,在 Siberia sturgeon(一种软骨鱼类)中,il17d mRNA的表达模式与其他鱼类和脊椎动物存在差异。在细菌感染早期,il17d mRNA的表达被抑制,随后逐渐升高。这表明,il17d在软骨鱼类的免疫应答中发挥着重要作用,并且具有独特的表达模式[9]。

在肝细胞癌(HCC)中,IL-17D是差异表达基因之一。研究发现,IL-17D的表达与HCC的预后密切相关。此外,IL-17D还与其他基因和通路一起,共同参与调控HCC的发生和发展。这些结果表明,IL-17D在HCC中发挥着重要作用,并且可以作为HCC的独立预后指标[10]。

综上所述,IL-17D是一种重要的IL-17家族成员,在多种疾病中发挥着重要作用。IL-17D可以调节免疫应答和炎症反应,影响疾病的发生和发展。此外,IL-17D还具有独特的结构和表达模式,使其在免疫系统中发挥着重要作用。随着研究的深入,IL-17D有望成为疾病诊断和治疗的新靶点。

参考文献:
1. Iwakura, Yoichiro, Ishigame, Harumichi, Saijo, Shinobu, Nakae, Susumu. . Functional specialization of interleukin-17 family members. In Immunity, 34, 149-62. doi:10.1016/j.immuni.2011.02.012. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21349428/
2. Taams, Leonie S, Steel, Kathryn J A, Srenathan, Ushani, Burns, Lachrissa A, Kirkham, Bruce W. . IL-17 in the immunopathogenesis of spondyloarthritis. In Nature reviews. Rheumatology, 14, 453-466. doi:10.1038/s41584-018-0044-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30006601/
3. Hamazaki, Nobuhiko, Uesaka, Masahiro, Nakashima, Kinichi, Agata, Kiyokazu, Imamura, Takuya. 2015. Gene activation-associated long noncoding RNAs function in mouse preimplantation development. In Development (Cambridge, England), 142, 910-20. doi:10.1242/dev.116996. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25633350/
4. Li, Huan, He, Zhaoxia, Deng, Bolin, Zhu, Jing, Gong, Bo. 2023. Cytokines and chemokines involved in HLA-B27-positive ankylosing spondylitis-associated acute anterior uveitis. In Molecular vision, 29, 378-385. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38577559/
5. Elder, Lily A, Hinnant, Holly R, Mandella, Chris M, Slanzon, Giovana S, McConnel, Craig S. 2023. Differential gene expression in peripheral leukocytes of pre-weaned Holstein heifer calves with respiratory disease. In PloS one, 18, e0285876. doi:10.1371/journal.pone.0285876. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37192182/
6. Wu, Xiao, Zhao, Huaxing, Lai, Junkun, Wu, Zhenfang, Li, Zicong. 2021. Interleukin 17D Enhances the Developmental Competence of Cloned Pig Embryos by Inhibiting Apoptosis and Promoting Embryonic Genome Activation. In Animals : an open access journal from MDPI, 11, . doi:10.3390/ani11113062. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34827794/
7. Siavoshi, A, Taghizadeh, M, Dookhe, E, Piran, M. 2021. Gene expression profiles and pathway enrichment analysis to identification of differentially expressed gene and signaling pathways in epithelial ovarian cancer based on high-throughput RNA-seq data. In Genomics, 114, 161-170. doi:10.1016/j.ygeno.2021.11.031. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34839022/
8. Liu, Xuying, Sun, Siyu, Liu, Dongyan. 2020. IL-17D: A Less Studied Cytokine of IL-17 Family. In International archives of allergy and immunology, 181, 618-623. doi:10.1159/000508255. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32516792/
9. Zhu, Hua, Song, Ruxing, Wang, Xiaowen, Hu, Hongxia, Zhang, Zuobing. 2017. Peritoneal bacterial infection repressed the expression of IL17D in Siberia sturgeon a chondrostean fish in the early immune response. In Fish & shellfish immunology, 64, 39-48. doi:10.1016/j.fsi.2017.03.011. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28279790/
10. Chen, Haitao, Li, Yueying, Xiao, Shu-Yuan, Guo, Jianchun. 2021. Identification of a five-immune gene model as an independent prognostic factor in hepatocellular carcinoma. In BMC cancer, 21, 278. doi:10.1186/s12885-021-08012-2. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33726698/