Oscp1-flox 基因敲除小鼠

下单100%中奖,最高可得千元京东卡
复苏/繁育服务
产品名称

Oscp1-flox 基因敲除小鼠

产品编号

S-CKO-07369

品系全称

C57BL/6JCya-Oscp1em1flox/Cya

品系背景

C57BL/6JCya

品系编号

CKOCMP-230751-Oscp1-B6J-VA

品系状态

使用本品系发表的文献需注明: Oscp1-flox 基因敲除小鼠 mice (Strain S-CKO-07369) were purchased from Cyagen.
交付类型
周龄
性别
基因型
数量
cKO小鼠库模型

基本信息

基因研究概述

质控标准

基因
基因全称
organic solute carrier partner 1
基因别称
1810007P19Rik,5730415O04,6030436A01Rik
染色体号
Chr 4 (Mouse)
转录本 ID
NCBI: NM_001356446.1 | Ensembl: ENSMUST00000143712
修饰方式
条件性基因敲除
靶向范围
Exon 6
敲除长度
~604 bp
品系说明
该品系是基于策略设计时的数据库信息制作而成,建议您在购买前查询最新的数据库和相关文献,以获取最准确的表型信息。
表型提示
Oscp1,也称为Organic Solute Carrier Partner 1,是一种在真核细胞中广泛表达的蛋白质,参与有机溶质的转运。Oscp1在细胞生长、细胞分化以及发育过程中发挥重要作用。研究表明,Oscp1在多种生物过程中发挥重要作用,包括细胞凋亡、细胞增殖、细胞分化和活性氧(ROS)的产生。此外,Oscp1还与多种疾病的发生发展密切相关,如心血管疾病、肿瘤和骨质疏松症等。本综述将对Oscp1的功能、表达模式和调控机制进行综述,并结合相关研究进展,探讨Oscp1在疾病发生发展中的作用。

在水稻中,Oscp1基因已被成功克隆和鉴定。研究发现,Oscp1基因在水稻花药中高度表达,可能参与水稻花药的发育过程[1]。此外,Oscp1基因的表达还受到干旱胁迫的影响,过表达Oscp1基因的水稻植株表现出更强的抗旱性[5]。在果蝇中,Oscp1基因的敲低导致成虫眼睛出现粗糙表型,表现为细胞凋亡增加、细胞增殖补偿和ROS产生增加[2]。这些研究表明,Oscp1在植物和动物中均具有重要作用,并可能参与调控细胞生长、细胞分化和发育过程。

Oscp1蛋白的亚细胞定位研究表明,Oscp1主要定位于细胞质膜、内质网、高尔基体和线粒体,但不在细胞质中。此外,Oscp1信号还可在细胞核中检测到,但强度较弱[3]。Oscp1蛋白在细胞内的这些亚细胞定位提示其可能与其他蛋白质相互作用,形成多聚体复合物,从而发挥多种生物学功能。

在小鼠中,Oscp1基因主要在睾丸中表达,其编码的蛋白质在精子发生过程中发挥重要作用。Oscp1蛋白在精子发生过程中以细胞类型和阶段特异性方式表达,并可能间接介导有机溶质进入减数分裂和精子发生细胞[4]。这些研究结果表明,Oscp1在生殖发育过程中发挥重要作用,并可能参与调控精子发生过程。

此外,Oscp1基因的表达还受到转录因子Tbx6的调控。研究发现,Tbx6基因敲除小鼠中,Oscp1基因的表达水平下调[6]。这表明,Tbx6可能通过直接结合Oscp1基因启动子区,调控Oscp1基因的表达。此外,组蛋白H2B单泛素化(H2Bub1)也被证明参与调控Oscp1基因的表达。研究发现,H2Bub1直接结合Oscp1基因,并与其他组蛋白修饰(如H3K4me2)共同调控Oscp1基因的表达[7]。这些研究结果表明,Oscp1基因的表达受到多种转录因子和表观遗传机制的调控。

综上所述,Oscp1是一种在植物和动物中广泛表达的蛋白质,参与有机溶质的转运,并在细胞生长、细胞分化、发育和生殖过程中发挥重要作用。Oscp1基因的表达受到多种转录因子和表观遗传机制的调控,并在多种疾病的发生发展中发挥重要作用。进一步研究Oscp1的生物学功能和调控机制,有助于深入理解其与疾病发生发展的关系,为疾病的治疗和预防提供新的思路和策略。

参考文献:
1. Lee, Sanghyun, Jung, Ki-Hong, An, Gynheung, Chung, Yong-Yoon. . Isolation and characterization of a rice cysteine protease gene, OsCP1, using T-DNA gene-trap system. In Plant molecular biology, 54, 755-65. doi:. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15356393/
2. Huu, Nguyen Tho, Yoshida, Hideki, Yamaguchi, Masamitsu. 2015. Tumor suppressor gene OSCP1/NOR1 regulates apoptosis, proliferation, differentiation, and ROS generation during eye development of Drosophila melanogaster. In The FEBS journal, 282, 4727-46. doi:10.1111/febs.13528. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26411401/
3. Huu, Nguyen Tho, Yoshida, Hideki, Umegawachi, Takanari, Miyata, Seiji, Yamaguchi, Masamitsu. 2014. Structural characterization and subcellular localization of Drosophila organic solute carrier partner 1. In BMC biochemistry, 15, 11. doi:10.1186/1471-2091-15-11. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24939707/
4. Hiratsuka, Kazuyuki, Yin, Shan-Ai, Ohtomo, Takayuki, Kurosawa, Tohru, Yamada, Junji. . Intratesticular localization of the organic solute carrier protein, OSCP1, in spermatogenic cells in mice. In Molecular reproduction and development, 75, 1495-504. doi:10.1002/mrd.20893. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18324622/
5. Guo, Changkui, Ge, Xiaochun, Ma, Hong. 2013. The rice OsDIL gene plays a role in drought tolerance at vegetative and reproductive stages. In Plant molecular biology, 82, 239-53. doi:10.1007/s11103-013-0057-9. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23686450/
6. Yasuhiko, Yukuto, Hirabayashi, Yoko, Ono, Ryuichi. 2017. LTRs of Endogenous Retroviruses as a Source of Tbx6 Binding Sites. In Frontiers in chemistry, 5, 34. doi:10.3389/fchem.2017.00034. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28664156/
7. Cao, Hong, Li, Xiaoying, Wang, Zhi, Li, Yong, Liu, Yong-Xiu. 2015. Histone H2B Monoubiquitination Mediated by HISTONE MONOUBIQUITINATION1 and HISTONE MONOUBIQUITINATION2 Is Involved in Anther Development by Regulating Tapetum Degradation-Related Genes in Rice. In Plant physiology, 168, 1389-405. doi:10.1104/pp.114.256578. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26143250/